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    CHO細胞培養(yǎng)技術(shù)經(jīng)驗分享

    發(fā)布時間: 2024-01-12  點擊次數(shù): 667次

    簡介:
    CHO細胞(Chinese hamster ovary cell,CHO)一個轉(zhuǎn)化細胞系,1957年從中國倉鼠卵巢細胞得到。CHO細胞目前是現(xiàn)代制藥企業(yè)進行研發(fā)、生產(chǎn)生物治療藥物 (單抗、酶、激酶和激素等) 中常用的非人類哺乳動物細胞系。

    原理:
    培養(yǎng)基無特殊要求,可有多種選擇,一般用DMEM(高糖)培養(yǎng)基+10%胎牛血清+2%雙抗。置于37℃,5%CO2的培養(yǎng)箱培養(yǎng)。每隔48h換液,或當(dāng)培養(yǎng)基呈現(xiàn)熒光黃色及時換液,否則細胞會出現(xiàn)大規(guī)模脫落和變形死亡。

    當(dāng)單層培養(yǎng)細胞匯合達90%以后(兩天左右),棄去培養(yǎng)基,用2ml不含鈣、鎂離子的PBS潤洗2次,用0.5mlPBS+0.5ml 含0.25%ETDA的胰蛋白酶消化1-2min(在培養(yǎng)箱放30s-1min),鏡下觀察變圓或輕輕擊打培養(yǎng)皿側(cè)壁發(fā)現(xiàn)有細胞團塊脫落或皿底花斑狀,用1ml(血清)細胞培養(yǎng)基終止消化,九宮格法吹落細胞收集到離心管,以800-1000rpm,室溫離心5min。

    以1:2~1:3的比例傳代,離心棄去廢液,用2ml~3ml(血清)細胞培養(yǎng)基充分重懸細胞沉淀成單個細胞,以“Z"字打入含有7ml培養(yǎng)基的10cm皿中,輕柔十字晃勻不超過十下并靜置數(shù)分鐘后鏡下觀察,平穩(wěn)放入培養(yǎng)箱中。

    凍存液的配置為血清:二甲基亞砜(DMSO)=9:1。取長勢良好,匯合度達90%并無污染的細胞,消化離心后用凍存液1.5ml重懸后轉(zhuǎn)移至凍存管中,標(biāo)記好細胞種類、日期、姓名,放入恢復(fù)室溫的梯度凍存盒,一同放置于-80°C冰箱。

    準(zhǔn)備好離心管中放入3ml(血清)細胞培養(yǎng)基,并確保水浴鍋打開并達到37℃,從-80℃冰箱取出目標(biāo)凍存管,放入密封袋并在水浴鍋中迅速搖晃解凍<1min,與3mL培養(yǎng)基混合均勻。在800 rpm,離心5分鐘,棄去上清液,用新培養(yǎng)基重懸細胞為單個細胞狀態(tài),加入10cm皿中,培養(yǎng)過夜。第二天換液并檢查細胞密度。

    注意事項:

    1.CHO細胞對損傷不易耐受,請注意密切觀察。

    2.不同胰酶消化速度有差別,根據(jù)經(jīng)驗調(diào)整用量和用時。

    3.細胞傳代用PBS洗的目的是去除舊培養(yǎng)基中血清對胰酶的抑制作用。

    4.不要將細胞中液體吸凈后放置過久,細胞變干后死亡。

    5.細胞消化所用胰酶的最適工作溫度大約在37攝氏度左右,故放入培養(yǎng)箱更好的促進胰酶消化。

    6.細胞凍存及復(fù)蘇的基本原則是慢凍快融,才能最大限度的保存細胞活力。(細胞保護劑(DMSO)能提高細胞膜對水的通透性,緩慢冷凍可使細胞內(nèi)的水分滲出細胞外,減少細胞內(nèi)冰晶形成造成的細胞損傷。復(fù)蘇時快速融化,避免由于緩慢融化使細胞外結(jié)晶的水分滲入細胞內(nèi)形成胞內(nèi)再結(jié)晶對細胞造成損傷)。

    7.細胞凍存嚴格遵循梯度降溫,不可直接放入低溫冰箱,如果沒有梯度凍存盒,可以4℃ 10-30min,-20℃ 30-1h,-80℃過夜。

    8.復(fù)蘇后第二天換液是為了去除殘留凍存液對細胞的傷害。

    9.細胞量少或凍存過久的細胞復(fù)蘇到中皿中,等長滿后傳代到大皿中。


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